細胞凍存及復蘇的基本原則和原理

細胞凍存及復蘇的基本原則是慢凍快融，實驗證明這樣可以最大限度的保存細胞活力。如今細胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護劑，這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性，加上緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外，減少細胞內冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細胞損傷。復蘇細胞應采用快速融化的方法，這樣可以保證細胞外結晶在很短的時間內即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。
 

細胞凍存的基本步驟

（一）細胞凍存

1.配制含10%DMSO或甘油、10～20%小牛血清的凍存培養液；

2.取對數生長期的細胞，去除舊培養液，用PBS清洗。

3.去除PBS，加入適量胰蛋白酶（覆蓋培養皿表面）把單層生長的細胞消化下來；

4.離心1000rpm，5min；

5.去除胰蛋白酶，加入適量配制好的凍存培養液，用吸管輕輕吹打使細胞均勻，計數，調節凍存液中細胞的最終密度為5×106/ml～1×107/ml；

6.將細胞分裝入凍存管中，每管1～1.5 ml；

7.在凍存管上標明細胞的名稱，凍存時間及操作者；

8.凍存：標準的凍存程序為降溫速率-1～-2℃/min；當溫度達-25℃以下時，可增至-5℃～-10℃/min；到-100℃時，則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h，然后放入-70℃冰箱中過夜，取出凍存管，移入液氮容器內。

（二）細胞復蘇

1.從液氮容器中取出凍存管，直接浸入37℃溫水中，并不時搖動令其盡快融化。

2.從37℃水浴中取出凍存管，打開蓋子，用吸管吸出細胞懸液，加到離心管并滴加10倍以上培養液，混勻；

3.離心，1000rpm，5min；

4.棄去上清液，加入含10%小牛血清培養液重懸細胞，計數，調整細胞密度，接種培養瓶，37℃培養箱靜置培養；

5.次日更換一次培養液，繼續培養。